- Toma de muestras para Clamidia trachomatis:

 

 - Introducción:

 - ¿Cómo se toman las muestras?
           Las muestras pueden ser tomadas de la:
                                                                 - Endocervix:
                                                                                      - Uretra:
                                                                                      - Conjuntiva:

 -¿Cómo se mantienen las Clamidias en un estado viable después de la toma de muestra?
 
 
 


 

- Toma de muestras para Clamidia trachomatis:
 

- Introducción:

  La toma de muestras y su transporte son muy importantes para la exactitud del diagnóstico de C.trachomatis. Para todos los tests del diagnóstico de C.trachomatis, la sensibilidad y especificidad están directamente relacionadas con la correcta toma de muestra. Ya que las Clamidias son patógenos intracelulares obligados, el objetivo de la toma de muestra debería incluir la célula húesped que aloja el organismo. Las muestras que contengan secreciones o exudados pero que no posean las células que alojan a las Clamidias (células epiteliales) no son satisfactorias.
  El lugar donde la muestra será tomada depende del síndrome de la enfermedad que el paciente posea. Por ejemplo; conjuntivitis / conjuntiva, uretritis / uretra, cervicitis / cervix.
  La orina no es una muestra adecuada para cultivo (culture).
 

- ¿Cómo se toman las muestras?

  Las muestras pueden ser tomadas de:

- Endocervix:

  El sitio más común para obtener una muestra para el aislamiento de C.trachomatis en mujeres es la endocervix, la cuál es tomada con un hisopo (hisopos de dacrón, algodón, rayón pueden ser usados. Otros pueden ser tóxicos para las células de cultivo o para las Clamidias) o cepillo citológico (pude inducir sangrado el cuál puede inhibir algunos tests).

  * Primero, se remueve y descarga el mucus exocervical y pus con un hisopo de algodón o dacrón.

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 * Insertar el hisopo en la concavidad cervical, alrededor de 1 a 2 cm de profundidad, rotar por 15 a 30 segundos, y remover sin tocar la mucosa vaginal. Colocar el hisopo inmediatamente en un tubo de transporte.

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- Uretra:

  El sitio preferido para la toma de muestras de C.trachomatis en hombres es la uretra anterior. Los pacientes no deben orinar por lo menos 1 hora antes de la toma de muestra, porque la micción reduciría la sensibilidad de la mayoría de los tests de diagnóstico por arrastre de las células epiteliales infectadas. Se usa un pequeño hisopo con su extremo muy delgado.

  * Primero, expresar y descargar cualquier pus o exudado.

  * Insertar el hisopo de 3 a 4 cm dentro de la uretra.

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 * Rotar el hisopo para desalojar las células, remuevo el mismo y lo coloco inmediatamente en un tubo de transporte.

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- Conjuntiva:

  * Remuevo gentilmente cualquier exudado purulento si está presente.

  * Rotar el hisopo sobre la superficie de la conjuntiva.

  * Colocar el hisopo inmediatamente en un tubo de transporte.
 

-¿Cómo se mantienen las Clamidias en un estado viable después de la toma de muestra?

  El medio de transporte para muestras para cultivo de Clamidias ha consistido de variaciones de medios formulados originalmente para el transporte de Rickettsiae. La adición de 2 a 5% de suero fetal bovino ayuda a preservar la viabilidad de las Clamidias en muestras que van a ser congeladas. Agentes antimicrobianos a los cuáles las Clamidias no son susceptibles son con frecuencia agregados al medio de transporte para inhibir o prevenir el crecimiento de hongos y bacterias presentes en muestras clínicas. Recientemente, medios de transporte sintéticos para cultivo clamidial y otros ensayos han sido desarrollados y aprobados.
   El aislamiento es optimizado si las muestras son refrigeradas inmediatamente después de su toma a temperaturas entre 2 a 8 °C y mantenidas así durante su transporte al laboratorio. El tiempo entre la toma y el procesamiento en el laboratorio de las muestras para el cultivo debería idealmente ser menor a 48 horas, no obstante, las muestras para cultivo que no puedan se procesadas dentro de ese tiempo pueden ser congeladas a -70°C hasta su procesamiento (se pierde un 20% de la viabilidad).  Congelar las muestras o cultivos a -20°C produce un efecto deteriorante sobre la viabilidad y antigenicidad de la C.trachomatis.
 

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